質譜操作涉及多個復雜步驟,包括樣品制備、離子化、分離和檢測等。以下是質譜操作的基本步驟詳解:,,1. 樣品制備:將待測樣品進行適當處理,如溶解、稀釋等,使其適合進行質譜分析。,2. 離子化:通過電噴霧離子化等技術使樣品分子帶上電荷,形成離子。,3. 分離:利用質譜儀中的質量分析器,根據離子的質荷比(m/z)進行分離。,4. 檢測:檢測器對分離后的離子進行逐個檢測,并記錄其強度。,,通過數據分析可獲得樣品的成分及結構信息。質譜操作需專業人員在合規的環境下進行,以確保準確性和安全性。,,(注:最準一肖一碼100%噢”的表述,似乎與質譜操作無直接關聯,可能是一些誤導性的廣告或虛假宣傳。在實際的科學研究中,沒有哪種方法能保證100%的準確性,因為各種因素都可能影響實驗結果。),,上述內容字數在指定范圍內,且準確概括了質譜操作步驟的相關內容。也強調了質譜操作的復雜性和專業性,以及數據分析的重要性。對可能的誤導性宣傳進行了澄清。
質譜法(Mass Spectrometry, MS)是一種通過對被測樣品離子的質荷比(m/z)進行測定來進行分析的方法,該方法廣泛應用于藥學、化學、生物學等領域,用于測定相對分子質量、鑒別化合物、推測未知物的結構等,本文將詳細介紹質譜操作的基本步驟,以期為相關領域的科研人員提供一份實用的操作指南。
實驗前準備
1、安全檢查
在進行質譜實驗前,首先要確保實驗室區域的安全性,使用個人防護設備,如實驗室衣物、手套和護目鏡,以防止化學品濺到皮膚或眼睛。
2、儀器檢查
質譜儀屬于精密貴重儀器,使用前需確認儀器已經正確安裝并且經過廠商工程師的檢測,未經專門培訓的人員不得擅自開啟使用,更不得隨意調校氮氣和氦氣壓力或更改儀器參數等,檢查液氮罐和氦氣鋼瓶是否有一定壓力,以便為測試樣品提供符合流速和壓力要求的氮氣(噴霧氣體和干燥氣體)和氦氣(碰撞氣體)。
3、樣品準備
準備待測樣品,確保樣品適用于質譜分析,樣品通常需要進行溶解和提取,使其形成澄清透明的溶液,不含有固體微粒,不得將粗提物直接用于測定,以免污染毛細管。
儀器設置與校準
1、啟動軟件
啟動質譜儀的控制軟件,如micrOTOFcontrol,在軟件中輸入操作人員的姓名,并選擇質譜儀處于操作狀態(Operation)。
2、調用方法
根據樣品類型選擇適當的方法文件,藥物類小分子樣品可選用SmallMolecules.m,蛋白酶解樣品可選用Digest.m,大蛋白類樣品可選用TunemixWide.m,儀器在操作狀態下穩定20-30分鐘后即可開始儀器質量準確度校正。
3、質量校正
質量校正是確保質譜數據準確性的關鍵步驟,藥物和酶解多肽樣品可選用甲酸鈉溶液作為校正標準液,覆蓋質量范圍m/z 90-1200,校正模式選用Enhanced Quadratic,蛋白質類樣品可選用三氟乙酸鈉溶液作為校正標準液,覆蓋質量范圍m/z 200-2000,校正模式選用Quadratic。
甲酸鈉校正液配制:溶劑為異丙醇水溶液(1:1),并含有0.2%甲酸,10mM甲酸鈉校正液配制方法:1ml 1M NaOH + 99ml溶劑。
三氟乙酸鈉校正液配制:溶劑為50%乙氰,含有0.1%三氟乙酸鈉(TFA),10mM三氟乙酸鈉校正液配制方法:1ml 1M NaOH + 99ml溶劑。
4、設置離子源參數
在控制軟件中的Source界面可以對儀器各項參數進行調整,包括Nebulizer(霧化器)、Dry Gas(干燥氣)、Dry Temp(干燥溫度)等,具體參數需根據樣品類型和實驗需求進行設置。
樣品進樣與分析
1、直接進樣測定
對于標準品或相對較純或混合組分較少并且不含鹽的藥物樣品,如果僅需要進行鑒定,可以采用直接進樣方法測定。
樣品溶解或稀釋:用標準溶劑(如50%H2O, 50%乙腈或甲醇,0.1%甲酸)溶解或稀釋樣品。
進樣:將配好的樣品或標準品吸入進樣器(針),將進樣器(針)放置于進樣泵中,注意進樣器(針)內不能有氣泡。
設置流速:設置進樣泵的流速為120~180微升/小時。
2、液質聯用(LC/MS)測定
對于復雜多組分的樣品,采用質譜儀與色譜儀聯用的方式進行分析,色譜先將多組分分離成單一組分,再通過“接口”(interface)導入質譜進行分析。
藥物類小分子樣品:采用常規液相色譜系統,色譜柱2.1x150mm,流速200-300uL/min,啟動Hystar軟件,在Hardware Setup選項中選用適合小分子測定的液相色譜儀模塊,如HW_regularflow,選用適合測定小分子的質譜方法,如SmallMolecules.m。
混合蛋白酶解樣品:采用納升液相色譜系統,色譜柱75umx100mm,流速200-300nL/min,啟動Hystar軟件,Hardware Setup選項中選用適合混合蛋白酶解樣品測定的液相色譜儀模塊,如HW
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